Und so wirds gemacht: Anwenden von Dip Slides
Anwendung:
Den Deckel des Behälters abschrauben und den Nährbodenträger entnehmen. Die Agarfläche(n) dabei nicht berühren.
| Probenauftrag | |
| Bei Flüssigkeiten | Nährbodenträger 5 - 10 sec in das Prüfmedium eintauchen. Überschüssige Flüssigkeit gut abtropfen lassen und den unteren Trägerrand auf ein sauberes Filterpapier oder Tuch tupfen. Nährboden in das Röhrchen zurückstellen und verschrauben. |
| Bei Flächen | Agarfläche(n) 5 - 10 sec auf die zu prüfende Fläche drücken. Bei Bedarf kann dazu der Schraubverschluss vom Nährbodenträger gelöst werden. Nährboden in das Röhrchen zurückstellen und verschrauben. |
| Bei unzugänglichen Flächen/Pulver | Mit Hilfe eines sterilen Wattetupfers einen Abstrich auf der/den Agarfläche(n) verteilen. Bei Dip Slides Combi ist für jede Agarfläche ein eigener Abstrich nötig. Nährboden in das Röhrchen zurückstellen und verschrauben. |
- Das Röhrchen mit Datum, Prüfort und Prüfmedium beschriften (Etiketten befinden sich in der Packung).
- Die Auswertung erfolgt nach der Inkubationszeit durch Vergleich der Koloniendichte auf der/den Agarfläche(n) mit Musterbildern.
- Zur sachgerechten Entsorgung empfehlen wir, kontaminierte Nährbodenträger über Nacht in eine 1 %ige Kohrsolin-Lösung einzulegen.
| Inkubationszeit aufrecht stehender Röhrchen | |
| im Brutschrank (27 °C - 30 °C) | 24 - 48 Stunden für Bakterien 72 Stunden für Hefen und Pilze |
| bei Raumtemperatur (ca. 20 °C) | 48 - 72 Stunden für Bakterien 4 - 5 Tage für Hefen und Pilze |